В 2023 г. по согласованию с руководством Ассоциации гепатопанкреатобилиарных хирургов стран СНГ было инициировано и проведено согласительное исследование по диагностике, лечению и наблюдению пациентов с серозными и муцинозными неоплазиями поджелудочной железы. На основании литературных справок были сформулированы ответы на каждый из 22 вопросов, оформленные в виде Консенсуса. В подготовке Консенсуса приняли участие 44 эксперта, представляющие 27 учреждений в 9 странах. Голосование проводили по методу Делфи, и в конечном итоге, включая результаты голосования по ряду положений на итоговой конференции, по всем вопросам был достигнут консенсус.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Здравоохранение
В последние десятилетия отмечен рост заболеваемости кистозными неоплазиями поджелудочной железы (КНПЖ), обусловленный в значительной мере улучшением доступности инструментальных методов обследования, таких как магнитно-резонансная томография (МРТ), компьютерная томография (КТ) и эндоскопическая ультрасонография [1].
Список литературы
1. Udare A., Agarwal M., Alabousi M., McInnes M., Rubino J.G., Marcaccio M., van der Pol C.B. Diagnostic accuracy of MRI for differentiation of benign and malignant pancreatic cystic lesions compared to CT and endoscopic ultrasound: systematic review and meta-analysis. J. Magn. Reson. Imaging. 2021; 54 (4): 1126-1137. DOI: 10.1002/jmri.27606
2. European Study Group on Cystic Tumours of the Pancreas. European evidence-based guidelines on pancreatic cystic neoplasms. Gut. 2018; 67 (5): 789-804. DOI: 10.1136/gutjnl-2018-316027
3. Tanaka M., Chari S., Adsay V., Fernandez-del Castillo C., Falconi M., Shimizu M., Yamaguchi K., Yamao K., Matsuno S.International Association of Pancreatology.International consensus guidelines for management of intraductal papillary mucinous neoplasms and mucinous cystic neoplasms of the pancreas. Pancreatology. 2006; 6 (1-2): 17-32. DOI: 10.1159/000090023
4. Li Y.J., Lee G.H., Yang M.J., Hwang J.C., Yoo B.M., Kim S.S., Lim S.G., Kim J.H. Diagnostic yield of transabdominal ultrasonography for evaluation of pancreatic cystic lesions compared with endoscopic ultrasonography. J. Clin. Med. 2021; 10 (19): 4616. DOI: 10.3390/jcm10194616
5. Cheung T.T., Lee Y.T., Tang R.S., She W.H., Cheng K.C., Cheung C.C., Chiu K.W.H., Chok K.S.H., Chow W.S., Lai T.W., Seto W.K., Yau T. The Hong Kong consensus recommendations on the diagnosis and management of pancreatic cystic lesions. Hepatobiliary Surg. Nutr. 2023; 12 (5): 715-735. DOI: 10.21037/hbsn-22-471
6. Mamone G., Barresi L., Tropea A., Di Piazza A., Miraglia R. MRI of mucinous pancreatic cystic lesions: a new updated morphological approach for the differential diagnosis. Updates Surg. 2020; 72 (3): 617-637. DOI: 10.1007/s13304-020-00800-y
7. Кригер А.Г., Пантелеев В.И., Джигкаева М.М., Будзинский С.А. Муцинозная цистаденома поджелудочной железы - нетипичный вариант течения заболевания. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2023; 12: 118-122.
Kriger A.G., Panteleev V.I., Dzhigkaeva M.M., Budzinskiy S.A. Pancreatic mucinous cystadenoma with atypical clinical presentation. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2023; 12: 118-122. (In Russian). DOI: 10.17116/hirurgia2023121118
8. Шабунин А.В., Тавобилов М.М., Карпов А.А., Паклина О.В., Сетдикова Г.Р., Иванова Н.А., Озерова Д.С. Ацинарноклеточная цистаденома головки поджелудочной железы (клиническое наблюдение). Анналы хирургической гепатологии. 2020; 25 (2): 145-151. DOI: 10.16931/1995-5464.20202145-151
Shabunin A.V., Tavobilov М. М., Karpov A. A., Paklina О. V., Setdikova G.R., Ivanova N.A., Ozerova D.S. Acinar cell cystadenoma of the pancreatic head. Annaly khirurgicheskoy gepatologii = Annals of HPB Surgery. 2020; 25 (2): 145-151. (In Russian). DOI: 10.16931/1995-5464.20202145-151
9. Pollini T., Marchegiani G., Facciorusso A., Balduzzi A., Biancotto M., Bassi C., Maker A.V., Salvia R. It is not necessary to resect all mucinous cystic neoplasms of the pancreas: current guidelines do not reflect the actual risk of malignancy. HPB (Oxford). 2023; 25 (7): 747-757. DOI: 10.1016/j.hpb.2023.03.001
10. Marchegiani G., Balduzzi A., Pollini T., Caravati A., Biancotto M., Andrianello S., Zampese M., Bassi C., Salvia R. The use of a mobile application to disseminate guidelines on cystic neoplasms of the pancreas - a snapshot study of 1000 case-simulations. Pancreatology. 2021; 21 (8): 1472-1475. DOI: 10.1016/j.pan.2021.09.009
11. Sahora K., Mino-Kenudson M., Brugge W., Thayer S.P., Ferrone C.R., Sahani D., Pitman M.B., Warshaw A.L., Lillemoe K.D., Fernandez-del Castillo C.F. Branch duct intraductal papillary mucinous neoplasms: does cyst size change the tip of the scale? A critical analysis of the revised international consensus guidelines in a large single-institutional series. Ann. Surg. 2013; 258 (3): 466-475. DOI: 10.1097/SLA.0b013e3182a18f48
12. Ohtsuka T., Fernandez-del Castillo C., Furukawa T., Hijioka S., Jang J., Lennon A.M., Miyasaka Y., Ohno E., Salvia R., Wolfgang C.L., Wood L.D.International evidence-based Kyoto guidelines for the management of intraductal papillary mucinous neoplasm of the pancreas. Pancreatology. 2024; 24 (2): 255-270. DOI: 10.1016/j.pan.2023.12.009
13. Listone H.A., Turoff M. The Delphi method: techniques and applications. J. Marketing Res. 1975; 18 (3). DOI: 10.2307/3150755
14. Spinelli K.S., Fromwiller T.E., Daniel R.A., Kiely J.M., Nakeeb A., Komorowski R.A., Wilson S.D., Pitt H.A. Cystic pancreatic neoplasms: observe or operate. Ann. Surg. 2004; 239 (5): 651-657; discussion 657-659. DOI: 10.1097/01.sla.0000124299.57430.ce
15. Hashimoto S., Hirooka Y., Kawabe N., Nakaoka K., Yoshioka K. Role of transabdominal ultrasonography in the diagnosis of pancreatic cystic lesions. J. Med. Ultrason. (2001). 2020; 47 (3): 389-399. DOI: 10.1007/s10396-019-00975-x
16. Zerboni G., Signoretti M., Crippa S., Falconi M., Arcidiacono P.G., Capurso G. Systematic review and metaanalysis: prevalence of incidentally detected pancreatic cystic lesions in asymptomatic individuals. Pancreatology. 2019; 19 (1): 2-9. DOI: 10.1016/j.pan.2018.11.014
17. Putzer D., Jaschke W. Radiological evaluation of focal pancreatic lesions. Dig. Dis. 2015; 33 (1): 91-98. DOI: 10.1159/000366045
18. Okasha H.H., Awad A., El-Meligui A., Ezzat R., Aboubakr A., AbouElenin S., El-Husseiny R., Alzamzamy A. Cystic pancreatic lesions, the endless dilemma. World J. Gastroenterol. 2021; 27 (21): 2664-2680. DOI: 10.3748/wjg.v27.i21.2664
19. Pandey P., Pandey A., Luo Y., Aliyari Ghasabeh M., Khoshpouri P., Ameli S., O’Broin-Lennon A.M., Canto M., Hruban R.H., Goggins M.S., Wolfgang C., Kamel I.R. Follow-up of incidentally detected pancreatic cystic neoplasms: do baseline MRI and CT features predict cyst growth? Radiology. 2019; 292 (3): 647-654. DOI: 10.1148/radiol.2019181686
20. Laffan T.A., Horton K.M., Klein A.P, Berlanstein B., Siegelman S.S., Kawamoto S., Johnson P.T., Fishman E.K., Hruban R.H. Prevalence of unsuspected pancreatic cysts on MDCT. AJR Am. J. Roentgenol. 2008; 191 (3): 802-807. DOI: 10.2214/AJR.07.3340
21. Sahani D.V., Kambadakone A., Macari M., Takahashi N., Chari S., Fernandez-del Castillo C. Diagnosis and management of cystic pancreatic lesions. AJR Am. J. Roentgenol. 2013; 200 (2): 343-354. DOI: 10.2214/AJR.12.8862
22. Chaudhari V.V., Raman S.S., Vuong N.L., Zimmerman P., Farrell J., Reber H., Sayre J., Lu D.S. Pancreatic cystic lesions: discrimination accuracy based on clinical data and high resolution CT features. J.Comput. Assist. Tomogr. 2007; 31 (6): 860-867. DOI: 10.1097/RCT.0b013e318039b277
23. Karsenti D., Gincul R., Belle A., Vienne A., Weiss E., Vanbiervliet G., Gronier O. Antibiotic prophylaxis in digestive endoscopy: Guidelines from the French Society of Digestive Endoscopy. Endosc.Int. Open. 2024; 12 (10): E1171-E1182. DOI: 10.1055/a-2415-9414
24. de Jong K., Nio C.Y., Mearadji B., Phoa S.S., Engelbrecht M.R., Dijkgraaf M.G., Bruno M.J., Fockens P. Disappointing interobserver agreement among radiologists for a classifying diagnosis of pancreatic cysts using magnetic resonance imaging. Pancreas. 2012; 41 (2): 278-282. DOI: 10.1097/MPA.0b013e31822899b6
25. Kloth C., Haggenmüller B., Beck A., Wagner M., Kornmann M., Steinacker J.P., Steinacker-Stanescu N., Vogele D., Beer M., Juchems M.S. Diagnostic, structured classification and therapeutic approach in cystic pancreatic lesions: systematic findings with regard to the European guidelines. Diagnostics (Basel). 2023; 13 (3): 454. DOI: 10.3390/diagnostics13030454
26. van Huijgevoort N.C.M., Del Chiaro M., Wolfgang C.L., van Hooft J.E., Besselink M.G. Diagnosis and management of pancreatic cystic neoplasms: current evidence and guidelines. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2019; 16 (11): 676-689. DOI: 10.1038/s41575-019-0195-x
27. Mohamed E., Jackson R., Halloran C.M., Ghaneh P. Role of radiological imaging in the diagnosis and characterization of pancreatic cystic lesions: a systematic review. Pancreas. 2018; 47 (9): 1055-1064. DOI: 10.1097/MPA.0000000000001134
28. Zhang Y., Wu J., He J., Xu S. Preoperative differentiation of pancreatic cystic neoplasm subtypes on computed tomography radiomics. Quant. Imaging Med. Surg. 2023; 13 (10): 6395-6411. DOI: 10.21037/qims-22-1192
29. de Moura D.T.H., Ryou M., de Moura E.G.H., Ribeiro I.B., Bernardo W.M., Thompson C.C. Endoscopic ultrasound-guided fine needle aspiration and endoscopic retrograde cholangiopancreatography-based tissue sampling in suspected malignant biliary strictures: a meta-analysis of same-session procedures. Clin. Endosc. 2020; 53 (4): 417-428. DOI: 10.5946/ce.2019.053
30. Sobhrakhshankhah E., Sohrabi M., Norouzi H.R., Zamani F., Ajdarkosh H., Nikkhah M., Khoonsari M.R., Faraji A.H. Tissue sampling through endoscopic ultrasound-guided fine needle aspiration versus endoscopic retrograde cholangiopan-creatographic brushing cytology technique in suspicious malignant biliary stricture. Middle East J. Dig. Dis. 2021; 13 (4): 294-301. DOI: 10.34172/mejdd.2021.238
31. Zhu H., Jiang F., Zhu J., Du Y., Jin Z., Li Z. Assessment of morbidity and mortality associated with endoscopic ultrasound-guided fine-needle aspiration for pancreatic cystic lesions: a systematic review and meta-analysis. Dig. Endosc. 2017; 29 (6): 667-675. DOI: 10.1111/den.12851
32. Yang D., Trindade A.J., Yachimski P., Benias P., Nieto J., Manvar A., Ho S., Esnakula A., Gamboa A., Sethi A., Gupte A., Khara H.S., Diehl D.L., El Chafic A., Shah J., Forsmark C.E., Draganov P.V. Histologic analysis of endoscopic ultrasound-guided through the needle microforceps biopsies accurately identifies mucinous pancreas cysts. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 2019; 17 (8): 1587-1596. DOI: 10.1016/j.cgh.2018.11.027
33. Wang Q.X., Xiao J., Orange M., Zhang H., Zhu Y.Q. EUS-guided FNA for diagnosis of pancreatic cystic lesions: a metaanalysis. Cell Physiol. Biochem. 2015; 36 (3): 1197-1209. DOI: 10.1159/000430290
34. Mohapatra S., Krishna S.G., Pannala R. Pancreatic cystic neoplasms: translating guidelines into clinical practice. Diagnostics (Basel). 2023; 13 (4): 749. DOI: 10.3390/diagnostics13040749
35. Коваленко Д.Д., Парфенчикова Е.В., Щадрова В.В., Носкова К.К., Рахметова Л.Ы., Орлова М.В., Гусарова О.А. Сложности диагностики солидной псевдопапиллярной неоплазии поджелудочной железы. Эффективная фармакотерапия. 2024; 20 (46): 88-93. DOI: 10.33978/2307-3586-2024-20-46-88-93
Kovalenko D.D., Parfenchikova E.V., Shchadrova V.V., Noskova K.K., Rakhmetova L.Y., Orlova M.V., Gusarova O.A. Difficulties in Diagnosing solid Pseudopapillary Neoplasia of the Pancreas. Effective Pharmacotherapy. 2024; 20 (46): 88-93. (In Russian). DOI: 10.33978/2307-3586-2024-20-46-88-93
36. Thornton G.D., McPhail M.J., Nayagam S., Hewitt M.J., Vlavianos P., Monahan K.J. Endoscopic ultrasound guided fine needle aspiration for the diagnosis of pancreatic cystic neoplasms: a meta-analysis. Pancreatology. 2013; 13 (1): 48-57. DOI: 10.1016/j.pan.2012.11.313
37. Layfield L.J., Ehya H., Filie A.C., Hruban R.H., Jhala N., Joseph L., Vielh P., Pitman M.B. Utilization of ancillary studies in the cytologic diagnosis of biliary and pancreatic lesions: the Papanicolaou Society of Cytopathology guidelines. Cytojournal. 2014; 11 (Suppl. 1): 4. DOI: 10.4103/1742-6413.133352
38. Khan I., Baig M., Bandepalle T., Puli S.R. Utility of cyst fluid carcinoembryonic antigen in differentiating mucinous and non-mucinous pancreatic cysts: an updated meta-analysis. Dig. Dis. Sci. 2022; 67 (9): 4541-4548. DOI: 10.1007/s10620-021-07315-5
39. Kazmi S.Z., Jung H.S., Han Y., Yun W.G., Cho Y.J., Lee M., Kwon W., Castillo C.F., Del Chiaro M., Marchegiani G., Goh B.K.P., Hijioka S., Majumder S., Nakai Y., Shin A., Jang J.Y. Systematic review on surveillance for non-resected branch-duct intraductal papillary mucinous neoplasms of the pancreas. Pancreatology. 2024; 24 (3): 463-488. DOI: 10.1016/j.pan.2024.02.015
40. Guzman-Calderôn E., Md B.M., Casellas J.A., Aparicio J.R.Intracystic glucose levels appear useful for diagnosis of pancreatic cystic lesions: a systematic review and meta-analysis. Dig. Dis. Sci. 2022; 67 (6): 2562-2570. DOI: 10.1007/s10620-021-07035-w
41. Lopes C.V. Cyst fluid glucose: an alternative to carcinoembry-onic antigen for pancreatic mucinous cysts. World J. Gastroenterol. 2019; 25 (19): 2271-2278. DOI: 10.3748/wjg.v25.i19.2271
42. Gorris M., Dijk F., Farina A., Halfwerk J.B., Hooijer G.K., Lekkerkerker S.J., Voermans R.P., Wielenga M.C., Besselink M.G., van Hooft J.E. Validation of combined carcinoembryonic antigen and glucose testing in pancreatic cyst fluid to differentiate mucinous from non-mucinous cysts. Surg. Endosc. 2023; 37 (5): 3739-3746. DOI: 10.1007/s00464-022-09822-6
43. McCarty TR., Paleti S., Rustagi T. Molecular analysis of EUS-acquired pancreatic cyst fluid for KRAS and GNAS mutations for diagnosis of intraductal papillary mucinous neoplasia and mucinous cystic lesions: a systematic review and meta-analysis. Gastrointest. Endosc. 2021; 93 (5): 1019-1033.e5. https://doi.org/10.1016Xj.gie.2020.12.014.
44. Singhi A.D., McGrath K., Brand R.E., Khalid A., Zeh H.J., Chennat J.S., Fasanella K.E., Papachristou G.I., Slivka A., Bartlett D.L., Dasyam A.K., Hogg M., Lee K.K., Marsh J.W., Monaco S.E., Ohori N.P., Pingpank J.F., Tsung A., Zureikat A.H., Wald A.I., Nikiforova M.N. Preoperative next-generation sequencing of pancreatic cyst fluid is highly accurate in cyst classification and detection of advanced neoplasia. Gut. 2018; 67 (12): 2131-2141. DOI: 10.1136/gutjnl-2016-313586
45. Степанова Ю.А., Караханян А.А., Шевченко Т.В., Айвазян Х.А., Жаворонкова О.И., Широков В.С., Глотов А.В., Чжао А.В. Цистаденокарцинома печени. Ошибочный диагноз, приведший к выраженной прогрессии заболевания. Высокотехнологическая медицина. 2022; 9 (4): 63-73.
Stepanova Yu.A., Karakhanyan A.A., Shevchenko T.V., Ayvazyan Kh.A., Zhavoronkova O.I., Shirokov V.S., Glotov A.V., Zhao A.V. Hepatic cystadenocarcinoma. erroneous diagnosis leading to a progressive progression of the disease. Vysokotekhnologicheskaya Medicina. 2022; 9 (4): 63-73. (In Russian).
46. Facciorusso A., Del Prete V., Antonino M., Buccino V.R., Wani S. Diagnostic yield of EUS-guided through-the-needle biopsy in pancreatic cysts: a meta-analysis. Gastrointest. Endosc. 2020; 92 (1): 1-8.e3. DOI: 10.1016/j.gie.2020.01.038
47. Tacelli M., Celsa C., Magro B., Barchiesi M., Barresi L., Capurso G., Arcidiacono P.G., Cammà C., Crinô S.F. Diagnostic performance of endoscopic ultrasound through-the-needle microforceps biopsy of pancreatic cystic lesions: systematic review with meta-analysis. Dig. Endosc. 2020; 32 (7): 1018-1030. DOI: 10.1111/den.13626
48. Котельников А.Г., Абгарян М.Г., Забежинский Д.А., Подлужный Д.В., Патютко Ю.И. Рак головки поджелудочной железы: современное лечение и дальнейшие перспективы. Вестник хирургической гастроэнтерологии. 2007; 3: 5-16.
Kotelnikov A.G., Abgaryan M.G., Zabezhinsky D.A., Podluzhny D.V., Patyutko Yu.I. Cancer of the Head of the Pancreas: Modern Treatment and Further Prospects. Journal “Heraldof surgical gastroenterology”. 2007; 3: 5- 16. (In Russian).
49. Polkowski M., Jenssen C., Kaye P., Carrara S., Deprez P., Gines A., Fernandez-Esparrach G., Eisendrath P., Aithal G.P., Arcidiacono P., Barthet M., Bastos P., Fornelli A., Napoleon B., Iglesias-Garcia J., Seicean A., Larghi A., Hassan C., van Hooft J.E., Dumonceau J.M. Technical aspects of endoscopic ultrasound (EUS)-guided sampling in gastroenterology: European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) Technical Guideline - March 2017. Endoscopy. 2017; 49 (10): 989-1006. DOI: 10.1055/s-0043-119219
50. Kromrey M.L., Bülow R., Hübner J., Paperlein C., Lerch M.M., Ittermann T., Völzke H., Mayerle J., Kühn J.P. Prospective study on the incidence, prevalence and 5-year pancreatic-related mortality of pancreatic cysts in a population-based study. Gut. 2018; 67 (1): 138-145. DOI: 10.1136/gutjnl-2016-313127
51. Карпов О.Э., Ветшев П.С., Бруслик С.В., Свиридова Т.И., Левчук А.Л., Саржевский В.О., Судиловская В.В. Ультразвуковая абляция (HIFU) в лечении нерезектабельных опухолей поджелудочной железы. Анналы хирургической гепатологии. 2015; 20 (3): 17-23. DOI: 10.16931/1995-5464.2015317-23
Karpov O.E., Vetshev P.S., Bruslik S.V., Sviridova T.I., Levchuk A.L., Sarzhevskiy V.O., Sudilovskaya V.V. Ultrasound ablation (HIFU) in the treatment of pancreatic unresectable tumors. Annaly khirurgicheskoy gepatologii = Annals of HPB Surgery. 2015; 20 (3): 17-23. (In Russian). DOI: 10.16931/1995-5464.2015317-23
52. Allen P.J., D’Angelica M., Gonen M., Jaques D.P., Coit D.G., Jarnagin W.R., DeMatteo R., Fong Y., Blumgart L.H., Brennan M.F. A selective approach to the resection of cystic lesions of the pancreas: results from 539 consecutive patients. Ann. Surg. 2006; 244 (4): 572-582. DOI: 10.1097/01.sla.0000237652.84466.54
53. Scheiman J.M., Hwang J.H., Moayyedi P. American Gastroenterological Association technical review on the diagnosis and management of asymptomatic neoplastic pancreatic cysts. Gastroenterology. 2015; 148 (4): 824-848.e22. DOI: 10.1053/j.gastro.2015.01.014
54. Correa-Gallego C., Miyasaka Y., Hozaka Y., Nishino H., Kawamoto M., Vieira D.L., Ohtsuka T., Wolfgang C. Surveillance after resection of non-invasive intraductal papillary mucinous neoplasms (IPMN). A systematic review. Pancreatology. 2023; 23 (3): 258-265. DOI: 10.1016/j.pan.2023.02.008
55. Ardeshna D.R., Cao T., Rodgers B., Onongaya C., Jones D., Chen W., Koay E.J., Krishna S.G. Recent advances in the diagnostic evaluation of pancreatic cystic lesions. World J. Gastroenterol. 2022; 28 (6): 624-634. DOI: 10.3748/wjg.v28.i6.624
56. Ren R., Krishna S.G., Chen W., Frankel W.L., Shen R., Zhao W., Avenarius M.R., Garee J., Caruthers S., Jones D. Activation of the RAS pathway through uncommon BRAF mutations in mucinous pancreatic cysts without KRAS mutation. Mod. Pathol. 2021; 34 (2): 438-444. DOI: 10.1016/j.dld.2020.06.038
57. Thosani N., Thosani S., Qiao W., Fleming J.B., Bhutani M.S., Guha S. Role of EUS-FNA-based cytology in the diagnosis of mucinous pancreatic cystic lesions: a systematic review and meta-analysis. Dig. Dis. Sci. 2010; 55 (10): 2756-2766. DOI: 10.1007/s10620-010-1361-8
58. Stelow E.B., Stanley M.W., Bardales R.H., Mallery S., Lai R., Linzie B.M., Pambuccian S.E.Intraductal papillary-mucinous neoplasm of the pancreas. The findings and limitations of cytologic samples obtained by endoscopic ultrasound-guided fine-needle aspiration. Am. J. Clin. Pathol. 2003; 120 (3): 398-404. DOI: 10.1309/CEPK-542W-3885-2LP8
59. Pitman M.B., Centeno B.A., Reid M.D., Siddiqui M.T., Layfield L.J., Perez-Machado M., Weynand B., Stelow E.B., Lozano M.D., Fukushima N., Cree I.A., Mehrotra R., Schmitt F.C., Field A.S. The World Health Organization Reporting System for Pancreaticobiliary Cytopathology. Acta Cytol. 2023; 67 (3): 304-320. DOI: 10.1159/000527912
60. International Academy of Cytology-International Agency for Research on Cancer-World Health Organization Joint Editorial Board. WHO Reporting System for Pancreaticobiliary Cytopathology. Vol. 2. 1st ed.International Agency for Research on Cancer; 2022. DOI: 10.1007/978-92-832-4518-6
61. Vilela A., Quingalahua E., Vargas A., Hawa F., Shannon C., Carpenter E.S., Shi J., Krishna S.G., Lee U.J., Chalhoub J.M., Machicado J.D. Global prevalence of pancreatic cystic lesions in the general population on magnetic resonance imaging: a systematic review and meta-analysis. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 2024; 22 (9): 1798-1809.e6. DOI: 10.1016/j.cgh.2024.02.018
62. Smith A.L., Abdul-Karim F.W., Goyal A. Cytologic categorization of pancreatic neoplastic mucinous cysts with an assessment of the risk of malignancy: a retrospective study based on the Papanicolaou Society of Cytopathology guidelines. Cancer Cytopathol. 2016; 124 (4): 285-293. DOI: 10.1002/cncy.21657
63. Pflüger M.J., Jamouss K.T., Afghani E., Lim S.J., Rodriguez Franco S., Mayo H., Spann M., Wang H., Singhi A., Lennon A.M., Wood L.D. Predictive ability of pancreatic cyst fluid biomarkers: a systematic review and meta-analysis. Pancreatology. 2023; 23 (7): 868-877. DOI: 10.1016/j.pan.2023.05.005
64. Hoda R.S., Arpin R.N. 3rd, Rosenbaum M.W., Pitman M.B. Risk of malignancy associated with diagnostic categories of the proposed World Health Organization International System for Reporting Pancreaticobiliary Cytopathology. Cancer Cytopathol. 2022; 130 (3): 195-201. DOI: 10.1002/cncy.22514
65. Serinelli S., Khurana K.K.Intraductal papillary mucinous neoplasms of the pancreas: cytologic-histologic correlation study and evaluation of the cytologic accuracy in identifying highgrade dysplasia/invasive adenocarcinoma. Cytojournal. 2024; 21: 6. DOI: 10.25259/Cytojournal_71_2023
66. Sinha S.R., Mondal S., Akhtar M.J., Singh R.K., Prakash P. Evaluating carcinoembryonic antigen and glucose levels in pancreatic cyst fluid for mucinous versus non-mucinous differentiation. Cureus. 2024; 16 (6): e62686. DOI: 10.7759/cureus.62686
67. Кошель А.П., Дроздов Е.С., Дибина ТВ., Клаков С.С., Миронова Е.Б., Ракина Ю.Ю. Комбинированный способ дифференциальной диагностики кистозных неоплазий поджелудочной железы. Сибирский онкологический журнал. 2018; 17 (6): 27-34. DOI: 10.21294/1814-4861-2018-17-6-27-34
Koshel A.P., Drozdov E.S., Dibina T.V., Klokov S.S., Mironova E.B., Rakina Yu.Yu. Combined method for differential diagnosis of pancreatic cystic neoplasm. Siberian Journal of Oncology. 2018; 17 (6): 27-34. (In Russian). DOI: 10.21294/1814-4861-2018-17-6-27-34
68. Bedi M.M., Gandhi M.D., Jacob G., Lekha V., Venugopal A., Ramesh H. CA 19-9 to differentiate benign and malignant masses in chronic pancreatitis: is there any benefit? Indian J. Gastroenterol. 2009; 28 (1): 24-27. DOI: 10.1007/s12664-009-0005-4
69. Haglund C., Lundin J., Kuusela P., Roberts PJ. CA 242, a new tumour marker for pancreatic cancer: a comparison with CA 19-9, CA 50 and CEA. Br. J. Cancer. 1994; 70 (3): 487-492. DOI: 10.1038/bjc.1994.332
70. Shibata H., Ohike N., Norose T., Isobe T., Suzuki R., Imai H., Shiokawa A., Aoki T., Murakami M., Mizukami H., Tanaka J.I., Takimoto M. Mucinous cystic neoplasms lined by abundant mucinous epithelium frequently involve KRAS mutations and malignant progression. Anticancer Res. 2017; 37 (12): 7063-7068. DOI: 10.21873/anticanres.12178
71. Conner J.R., Marino-Enriquez A., Mino-Kenudson M., Garcia E., Pitman M.B., Sholl L.M., Srivastava A., Doyle L.A. Genomic characterization of low- and high-grade pancreatic mucinous cystic neoplasms reveals recurrent KRAS alterations in “high-risk” lesions. Pancreas. 2017; 46 (5): 665-671. DOI: 10.1097/MPA.0000000000000805
72. Sakhdari A., Moghaddam P.A., Ok C.Y., Walter O., Tomaszewicz K., Caporelli M.L., Meng X., LaFemina J., Whalen G., Belkin E., Zivny J., Wassef W., Woda B.A., Hutchinson L.M., Cosar E.F. Somatic molecular analysis augments cytologic evaluation of pancreatic cyst fluids as a diagnostic tool. Oncotarget. 2019; 10 (40): 4026-4037. DOI: 10.18632/oncotarget.26999
73. Jang K.T., Park S.M., Basturk O., Bagci P., Bandyopadhyay S., Stelow E.B., Walters D.M., Choi D.W., Choi S.H., Heo J.S., Sarmiento J.M., Reid M.D., Adsay V. Clinicopathologic characteristics of 29 invasive carcinomas arising in 178 pancreatic mucinous cystic neoplasms with ovarian-type stroma: implications for management and prognosis. Am. J. Surg. Pathol. 2015; 39 (2): 179-187. DOI: 10.1097/PAS.0000000000000357
74. Yamao K., Yanagisawa A., Takahashi K., Kimura W., R., Fukushima N., Ohike N., Shimizu M., Hatori T., Nobukawa B., Hifumi M., Kobayashi Y., Tobita K., Tanno S., Sugiyama M., Miyasaka Y., Nakagohri T., Yamaguchi T., Hanada K., Abe H., Tada M., Fujita N., Tanaka M. Clinicopathological features and prognosis of mucinous cystic neoplasm with ovarian-type stroma: a multi-institutional study of the Japan Pancreas Society. Pancreas. 2011; 40 (1): 67-71. DOI: 10.1097/MPA.0b013e3181f749d3
75. Prabhakar L.P., Orchard T.F., Hughes S., van Heerden J.A., DiMagno E.P. Clinical and pathologic correlation of 84 mucinous cystic neoplasms of the pancreas: can one reliably differentiate benign from malignant (or premalignant) neoplasms? Ann. Surg. 2000; 231 (2): 205-212. DOI: 10.1097/00000658-200002000-00009
76. Munigala S., Gelrud A., Agarwal B. Risk of pancreatic cancer in patients with pancreatic cyst. Gastrointest. Endosc. 2016; 84 (1): 81-86. DOI: 10.1016/j.gie.2015.10.030
77. Паклина О.В., Сетдикова Г.Р., Чекмарева И.А. Морфологическая характеристика кистозных опухолей поджелудочной железы. Анналы хирургической гепатологии. 2012; 17 (1): 26-34.
Paklina O.V., Setdikovа G.R., Chekmaryova I.A. Morphological characteristic of pancreatic cystic tumors. Annaly khirurgich-eskoy gepatologii = Annals of HPB Surgery. 2012; 17 (1): 26-34. (In Russian).
78. Kuboki Y., Shimizu K., Hatori T., Yamamoto M., Shibata N., Shiratori K., Furukawa T. Molecular biomarkers for progression of intraductal papillary mucinous neoplasm of the pancreas. Pancreas. 2015; 44 (2): 227-235. DOI: 10.1097/MPA.0000000000000253
79. Furukawa T., Kuboki Y., Tanji E., Yoshida S., Hatori T., Yamamoto M., Shibata N., Shimizu K., Kamatani N., Shiratori K. Whole-exome sequencing uncovers frequent GNAS mutations in intraductal papillary mucinous neoplasms of the pancreas. Sci. Rep. 2011; 1: 161. DOI: 10.1038/srep00161
80. Jais B., Rebours V., Malleo G., Salvia R., Fontana M., Maggino L., Bassi C., Manfredi R., Moran R., Lennon A.M., Zaheer A., Wolfgang C., Hruban R., Marchegiani G., Fernandez Del Castillo C., Brugge W., Ha Y., Kim M.H., Oh D., Hirai I., Kimura W., Jang J.Y., Kim S.W., Jung W., Kang H., Song S.Y., Kang C.M., Lee W.J., Crippa S., Falconi M., Gomatos I., Neoptolemos J., Milanetto A.C., Sperti C., Ricci C., Casadei R., Bissolati M., Balzano G., Frigerio I., Girelli R., Delhaye M., Bernier B., Wang H., Jang K.T., Song D.H., Huggett M.T., Oppong K.W., Pererva L., Kopchak K.V., Del Chiaro M., Segersvard R., Lee L.S., Conwell D., Osvaldt A., Campos V., Aguero Garcete G., Napoleon B., Matsumo to I., Shinzeki M., Bolado F., Fernandez J.M., Keane M.G., Pereira S.P., Acuna I.A., Vaquero E.C., Angiolini M.R., Zerbi A., Tang J., Leong R.W., Faccinetto A., Morana G., Petrone M.C., Arcidiacono P.G., Moon J.H., Choi H.J., Gill R.S., Pavey D., Ouaïssi M., Sastre B., Spandre M., De Angelis C.G., Rios-Vives M.A., Concepcion-Martin M., Ikeura T., Okazaki K., Frulloni L., Messina O., Lévy P. Serous cystic neoplasm of the pancreas: a multinational study of 2622 patients under the auspices of the International Association of Pancreatology and European Pancreatic Club (European Study Group on Cystic Tumors of the Pancreas). Gut. 2016; 65 (2): 305-312. DOI: 10.1136/gutjnl-2015-309638
81. Brugge W.R., Lewandrowski K., Lee-Lewandrowski E., Centeno B.A., Szydlo T., Regan S., del Castillo C.F., Warshaw A.L. Diagnosis of pancreatic cystic neoplasms: a report of the cooperative pancreatic cyst study. Gastroenterology. 2004; 126 (5): 13301336. DOI: 10.1053/j.gastro.2004.02.013
82. Cizginer S., Turner B., Bilge A. R., Karaca C., Pitman M.B., Brugge W.R. Cyst fluid carcinoembryonic antigen is an accurate diagnostic marker of pancreatic mucinous cysts. Pancreas. 2011; 40 (7): 1024-1028. DOI: 10.1097/MPA.0b013e31821bd62f
83. Ribaldone D.G., Bruno M., Gaia S., Cantamessa A., Bragoni A., Caropreso P., Sacco M., Fagoonee S., Saracco G.M., De Angelis C. Differential diagnosis of pancreatic cysts: a prospective study on the role of intra-cystic glucose concentration. Dig. Liver Dis. 2020; 52 (9): 1026-1032. DOI: 10.1016/j.dld.2020.06.038
84. Mohan B.P, Madhu D., Khan S.R., Kassab L.L., Ponnada S., Chandan S., Facciorusso A., Crino S.F., Barresi L., McDonough S., Adler D.G.Intracystic glucose levels in differentiating mucinous from nonmucinous pancreatic cysts: a systematic review and meta-analysis. J. Clin. Gastroenterol. 2022; 56 (2): e131-e136. DOI: 10.1097/MCG.0000000000001507
85. Jeon J.H., Kim J.H., Joo I., Lee S., Choi S.Y., Han J.K. Transabdominal ultrasound detection of pancreatic cysts incidentally detected at CT, MRI, or endoscopic ultrasound. AJR Am. J. Roentgenol. 2018; 210 (3): 518-525. DOI: 10.2214/AJR.17.18449
86. Stern L., Schuette M., Goetz M.R., Nitschke C., Bardenhagen J., Scognamiglio P., Stüben B.O., Calavrezos L., Amin T., Heumann A., Lohse A.W., de Heer G., Izbicki J.R., Uzunoglu F.G. Perioperative management of pancreatic exocrine insufficiency-evidence-based proposal for a paradigm shift in pancreatic surgery. HPB (Oxford). 2024; 26 (1): 117-124. DOI: 10.1016/j.hpb.2023.09.003
87. Егоров В.И., Вишневский В.А., Щеголев А.И., Кармазановский Г.Г., Шевченко ТВ., Яшина Н.И., Дубова Е.А., Плотникова Л.С., Мелехина О.В., Козырин И.А. Резекция поджелудочной железы при неинвазивных внутрипротоковых папиллярных муцинозных опухолях. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2009; 3: 53-60.
Egorov V.I., Vishnevskiy V.A., Shchegolev A.I., Karmazanovsky G.G., Shevchenko T.V., Iashina N.I., Dubova E.A., Plotnikova L.S., Melekhina O.V., Kozyrin I. A. Pancreatic resections in treatment of intraductal noninvasive papillary mucinous tumors. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2009; 3: 53-60. (In Russian).
88. Choi S.H., Park S.H., Kim K.W., Lee J.Y., Lee S.S. Progression of unresected intraductal papillary mucinous neoplasms of the pancreas to cancer: a systematic review and meta-analysis. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 2017; 15 (10): 1509-1520.e4. DOI: 10.1016/j.cgh.2017.03.020
89. Lensing R.J., Bipat S. Incidences of pancreatic malignancy and mortality in patients with untreated branch-duct intraductal papillary mucinous neoplasms undergoing surveillance: a systematic review. Pancreas. 2017; 46 (9): 1098-1110. DOI: 10.1097/MPA.0000000000000907
90. Lee S.W., Shim S.R., Jeong S.Y., Kim S.J.Comparison of preoperative imaging modalities for the assessment of malignant potential of pancreatic cystic lesions: a network meta-analysis. Clin. Nucl. Med. 2022; 47 (10): 849-855. DOI: 10.1097/RLU.0000000000004323
91. Wood L.D., Adsay N.V., Basturk O., Brosens L.A.A., Fukushima N., Hong S.M., Kim S.J., Lee J.W., Luchini C., Noë M., Pitman M.B., Scarpa A., Singhi A.D., Tanaka M., Furukawa T. Systematic review of challenging issues in pathology of intraductal papillary mucinous neoplasms. Pancreatology. 2023; 23 (7): 878-891. DOI: 10.1016/j.pan.2023.08.002
92. Frankel T.L., LaFemina J., Bamboat Z.M., DAngelica M.I., DeMatteo R.P., Fong Y., Kingham T.P., Jarnagin W.R., Allen PJ. Dysplasia at the surgical margin is associated with recurrence after resection of non-invasive intraductal papillary mucinous neoplasms. HPB (Oxford). 2013; 15 (10): 814-821. DOI: 10.1111/hpb.12137
93. Li S.Y., Wang Z.J., Pan C.Y., Wu C., Li Z.S., Jin Z.D., Wang K.X.Comparative performance of endoscopic ultrasound-based techniques in patients with pancreatic cystic lesions: a network meta-analysis. Am. J. Gastroenterol. 2023; 118 (2): 243-255. DOI: 10.14309/ajg.0000000000002088
94. Ohno E., Balduzzi A., Hijioka S., De Pastena M., Marchegiani G., Kato H., Takenaka M., Haba S., Salvia R. Association of high-risk stigmata and worrisome features with advanced neoplasia in intraductal papillary mucinous neoplasms (IPMN): a systematic review. Pancreatology. 2024; 24 (1): 48-61. DOI: 10.1016/j.pan.2023.12.002
95. Nilsson L.N., Keane M.G., Shamali A., Millastre Bocos J., Marijinissen van Zanten M., Antila A., Verdejo Gil C., Del Chiaro M., Laukkarinen J. Nature and management of pancreatic mucinous cystic neoplasm (MCN): a systematic review of the literature. Pancreatology. 2016; 16 (6): 1028-1036. DOI: 10.1016/j.pan.2016.09.011
96. Reid M.D., Choi H.J., Memis B., Krasinskas A.M., Jang K.T., Akkas G., Maithel S.K., Sarmiento J.M., Kooby D.A., Basturk O., Adsay V. Serous neoplasms of the pancreas: a clinicopathologic analysis of 193 cases and literature review with new insights on macrocystic and solid variants and critical reappraisal of so-called “serous cystadenocarcinoma”. Am. J. Surg. Pathol. 2015; 39 (12): 1597-1610. DOI: 10.1097/PAS.0000000000000559
97. Цвиркун В.В., Буриев И.М., Глабай В.П. Резолюция XVI Международного конгресса хирургов-гепатологов. Анналы хирургической гепатологии. 2009; 14 (4): 112-115.
Tsvirkun V.V., Buriev I.M., Glabay V.P. The resolution of the XVI International Conference of Surgeon Hepatologists of SIS Countries, Ekaterinburg, 2009. Annaly khirurgicheskoy gepatologii =Annals of HPB Surgery. 2009; 14 (4): 112-115. (In Russian).
98. Roch A.M., Ceppa E.P., DeWitt J.M., Al-Haddad M.A., House M.G., Nakeeb A., Schmidt C.M.International Consensus Guidelines parameters for the prediction of malignancy in intraductal papillary mucinous neoplasm are not properly weighted and are not cumulative. HPB (Oxford). 2014; 16 (10): 929-935. DOI: 10.1111/hpb.12305
99. Tyutyunnik P., Klompmaker S., Lombardo C., Lapshyn H., Menonna F., Napoli N., Wellner U., Izrailov R., Baychorov M., Besselink M.G., Abu Hilal M., Fingerhut A., Boggi U., Keck T., Khatkov I. European Consortium on Minimally Invasive Pancreatic Surgery. Learning curve of three European centers in laparoscopic, hybrid laparoscopic, and robotic pancreatoduodenectomy. Surg. Endosc. 2022; 36 (2): 1515-1526. DOI: 10.1007/s00464-021-08439-5
100. Кармазановский Г.Г. МСКТ- и МРТ-диагностика кистозных опухолей поджелудочной железы. Анналы хирургической гепатологии. 2012; 17 (1): 11-16.
Karmazanovsky G.G. MDCT and MRI diagnostics of pancreatic cystic tumors (lecture). Annaly khirurgicheskoy gepatologii = Annals of HPB Surgery. 2012; 17 (1): 11-16. (In Russian).
101. Neoptolemos J.P., Palmer D.H., Ghaneh P., Psarelli E.E., Valle J.W., Halloran C.M., Faluyi O., O’Reilly D.A., Cunningham D., Wadsley J., Darby S., Meyer T., Gillmore R., Anthoney A., Lind P., Glimelius B., Falk S., Izbicki J.R., Middleton G.W., Cummins S., Ross P.J., Wasan H., McDonald A., Crosby T., Ma Y.T., Patel K., Sherriff D., Soomal R., Borg D., Sothi S., Hammel P., Hackert T., Jackson R., Büchler M.W. European Study Group for Pancreatic Cancer.Comparison of adjuvant gemcitabine and capecitabine with gemcitabine monotherapy in patients with resected pancreatic cancer (ESPAC-4): a multicentre, open-label, randomised, phase 3 trial. Lancet. 2017; 389 (10073): 1011-1024. DOI: 10.1016/S0140-6736(16)32409-6
102. Conroy T., Hammel P., Hebbar M., Ben Abdelghani M., Wei A.C., Raoul J.L., Choné L., Francois E., Artru P., Biagi J.J., Lecomte T., Assenat E., Faroux R., Ychou M., Volet J., Sauvanet A., Breysacher G., Di Fiore F., Cripps C., Kavan P., Texereau P., Bouhier-Leporrier K., Khemissa-Akouz F., Legoux J.L., Juzyna B., Gourgou S., O’Callaghan C.J., Jouffroy-Zeller C., Rat P., Malka D., Castan F., Bachet J.B. Canadian Cancer Trials Group and the Unicancer-GI-PRODIGE Group. FOLFIRINOX or gemcitabine as adjuvant therapy for pancreatic cancer. N. Engl. J. Med. 2018; 379 (25): 2395-2406. DOI: 10.1056/NEJMoa1809775
Выпуск
Другие статьи выпуска
Руководящие принципы по лечению панкреатических кистозных новообразований (ПКН), основанные на доказательствах, отсутствуют. Это руководство является совместной инициативой Европейской исследовательской группы по кистозным опухолям поджелудочной железы (ПЖ), Объединения европейских гастроэнтерологов, Европейского клуба панкреатологов, Европейско-Африканской ассоциации гепатопанкреатобилиарной системы, Европейской хирургии пищеварительного тракта и Европейского общества гастроинтестинальной эндоскопии. Оно заменяет Европейские консенсусные рекомендации 2013 г. по ПКН.
Цель. Анализ современных методов диагностики и эндоскопического лечения при вирсунголитиазе, а также демонстрация клинического наблюдения успешного применения этапного эндоскопического лечения.
Материал и методы. Проведен анализ литературы и описано клиническое наблюдение пациентки с вирсунголитиазом, осложненным острой блокадой большого сосочка двенадцатиперстной кишки.
Результаты. Эндоскопические технологии позволили устранить обструкцию большого сосочка, удалить конкременты, восстановить проходимость протоков, избежать открытого оперативного вмешательства на поджелудочной железе. После трех этапов лечения (папиллотомия, литэкстракция, рестентирование) достигнута нормализация состояния больной и лабораторных показателей.
Заключение. Эндоскопические методы (литотрипсия, стентирование) – стандарт лечения при вирсунголитиазе благодаря минимальной инвазивности, эффективности и малому риску рецидива. Однако осложнения стентирования требуют строгого контроля. Клиническое наблюдение подтверждает необходимость поэтапного подхода и разработки стандартизованных протоколов для оптимизации результатов лечения.
Цель: определение факторов, влияющих на наличие остаточных камней после холедохоскопии и литотрипсии.
Материал и методы. В нашем ретроспективном исследовании принял участие 201 пациент с гепатолитиазом и стенозом желчных протоков. С января 2018 г. по декабрь 2020 г. все пациенты перенесли холедохоскопическую литотрипсию с рассечением или без рассечения паренхимы и резекцией печени в отделении гепатобилиарной хирургии в больнице VietDuc University (Ханой, Вьетнам). Были собраны демографические данные, выявлены клинические особенности, получены результаты лабораторных исследований, установлен тип операции и особенности стеноза желчных протоков (локализация, число, степень выраженности). Основным критерием оценки была частота полного удаления камней в послеоперационном периоде.
Результаты. У 82,6% пациентов был выявлен один участок стеноза, у 49,8% – несколько участков. Частота полного удаления камней после холедохоскопической литотрипсии составила 43,2%, а в сочетании с резекцией печени или рассечением паренхимы – 75,3%. Использование нескольких методов лечения и тип внутри печеночных камней являются двумя факторами, влияющими на наличие остаточных камней после операции.
Заключение. Холедохоскопия является эффективным способом диагностики желчных камней и выявления особенностей желчных протоков. Резекция печени и рассечение паренхимы в сочетании с холедохоскопической литотрипсией представляют собой безопасный и эффективный метод лечения, повышающий частоту полного удаления камней при гепатолитиазе и стенозе желчных протоков. В осложненных случаях, связанных с внутрипеченочными камнями, необходимо комплексное и интенсивное лечение.
Цель. Оценить роль выбора эндоскопической операции при лечении пациентов с аденомами большого сосочка двенадцатиперстной кишки, используя разработанную эндоскопическую классификацию аденом.
Материал и методы. С 2000 по 2024 г. выполнено эндоскопическое удаление аденом большого сосочка двенадцатиперстной кишки 200 пациентам. В 165 наблюдениях на этапе диагностики применяли эндо-УЗИ, в 35 наблюдениях метод не применяли.
Результаты. Технический успех при эндоскопическом удалении аденом большого сосочка двенадцатиперстной кишки в обеих группах составил 100%. Частота послеоперационных осложнений в основной группе составила 16,9%, в группе сравнения – 40%. В отдаленном периоде наблюдения частота рецидива аденомы составила 6,6% в основной группе и 20% – в группе сравнения.
Заключение. Персонифицированный выбор оптимального метода оперативного вмешательства для удаления аденом большого сосочка двенадцатиперстной кишки в зависимости от классификационного типирования новообразования позволяет минимизировать риск послеоперационных осложнений и улучшить радикальность вмешательства.
Цель. Оценка непосредственных результатов энуклеации и резекционных вмешательств при нейроэндокринных опухолях поджелудочной железы G1–G2.
Материал и методы. В исследование включен 171 пациент с нейроэндокринными опухолями поджелудочной железы G1–G2. Панкреатодуоденальная резекция выполнена 25 больным, дистальная резекция – 60, энуклеация – 86.
Результаты. В цефалоцервикальном сегменте поджелудочной железы нейроэндокринные опухоли выявлены у 79 пациентов. Энуклеация опухоли выполнена в 54 наблюдениях, панкреатодуоденальная резекция – в 25. Осложнения после энуклеации развились у 22 (40,7%) пациентов, умер 1; после панкреатодуоденальной резекции осложнения выявлены у 9 (36%) больных, умер 1. В корпорокаудальном сегменте нейроэндокринные опухоли локализовались у 92 человек. Энуклеация выполнена в 32 наблюдениях, дистальная резекция поджелудочной железы – в 60. Осложнения после энуклеации отмечены у 5 (15,6%) пациентов, после дистальной резекции – у 27 (45,5%).
Заключение. При высокодифференцированных нейроэндокринных опухолях возможно выполнение энуклеации опухоли. Объем операции определяется размером опухоли, локализацией относительно протока поджелудочной железы, а также личным решением хирурга.
Цель. Изучить роль локализации и гистогенеза опухолей в качестве фактора риска осложнений и летального исхода после мультивисцеральных операций с панкреатодуоденальной резекцией.
Материал и методы. В исследование включили всех пациентов (n = 251), которые перенесли мультивисцеральную операцию с панкреатодуоденальной резекцией по поводу опухолей различных локализаций в двух лечебных учреждениях.
Результаты. При сравнительном анализе плотности поджелудочной железы достоверные различия получены между раком поджелудочной железы и раком большого сосочка двенадцатиперстной кишки (p = 0,012), раком дистального отдела общего желчного протока (p = 0,040), опухолями двенадцатиперстной кишки (p < 0,001), вторичными опухолями поджелудочной железы (p < 0,001), раком толстой кишки (p < 0,001), раком почки (p = 0,027), раком желудка (p < 0,001). Также достоверные различия получены при анализе пар рак большого сосочка двенадцатиперстной кишки – рак толстой кишки (p = 0,010); нейроэндокринная опухоль головки поджелудочной железы – рак толстой кишки (p < 0,001); нейроэндокринная опухоль поджелудочной железы – рак желудка (p = 0,006). При сравнительном анализе диаметра протока поджелудочной железы различия были достоверны между опухолями двенадцатиперстной кишки и раком поджелудочной железы (p = 0,016), раком толстой кишки и раком поджелудочной железы (p < 0,001), раком желудка и раком поджелудочной железы (p = 0,016). Частота послеоперационных осложнений во всей исследуемой группе составила 65,7% (n = 165), летальность – 7,2% (n = 18). Вероятность развития панкреатического свища достоверно увеличивалась при раке дистального отдела общего желчного протока (AOR 5,9; 95% ДИ 1,4–24,6; p = 0,015), при вторичных опухолях головки поджелудочной железы (AOR 4,7; 95% ДИ 1,06–21,0; p = 0,041), при раке желудка (AOR 2,8; 95% ДИ 1,048–7,691; p = 0,040). Вероятность развития несостоятельности панкреатодигестивного анастомоза больше при раке дистального отдела общего желчного протока (AOR 7,8; 95% ДИ 1,7–35,05; p = 0,007). При вторичных злокачественных новообразованиях головки поджелудочной железы вероятность летального исхода после операции достоверно больше (AOR 9,7; 95% ДИ 1,79–52,8; p = 0,008).
Заключение. Локализация и гистогенез опухоли могут быть независимыми факторами, определяющими непосредственный исход мультивисцеральной операции с панкреатодуоденальной резекцией. Протоковый рак головки поджелудочной железы является наиболее благоприятным гистотипом опухоли и локализацией в плане риска послеоперационных осложнений. Операции при раке общего желчного протока, метастатических опухолях головки поджелудочной железы, раке желудка сопровождаются значимо худшими непосредственными исходами.
Внутрипротоковые папиллярные муцинозные неоплазии представляют собой кистозные новообразования поджелудочной железы с риском малигнизации. Обзор затрагивает современные рекомендации по лечению пациентов с этим заболеванием, показания к хирургическому вмешательству, результаты оперативного лечения и стратегии наблюдения за пациентами. В нем также освещены последние достижения в мини-инвазивной хирургии и новые биомаркеры, направленные на совершенствование распределения рисков по уровням и сокращение числа неоправданных оперативных вмешательств.
Цель. Анализ последних взглядов на концепцию злокачественной прогрессии внутрипротоковой папиллярной муцинозной опухоли поджелудочной железы и наиболее значимых перспектив научных исследований в этой области.
Материал и методы. Обзор литературных данных, анализ данных канцер-регистра г. Москвы.
Результаты. Приведены наиболее значимые молекулярно-генетические исследования за последние десятилетия. На примере анализа данных операционного материала по кодам ICD-O г. Москвы за 2023–2024 гг. рассмотрены основные трудности морфологической диагностики внутрипротоковой папиллярной муцинозной опухоли поджелудочной железы с ассоциированной инвазивной карциномой.
Заключение. Геномные изменения во внутрипротоковой папиллярной муцинозной опухоли поджелудочной железы как фоновые поражения для протокового рака поджелудочной железы, обусловливающие их генетическую гетерогенность, имеют большое клиническое значение для понимания поликлональной теории развития рака, поиска новых мишеней и подходов в терапии. Ассоциированный инвазивный компонент во внутрипротоковой папиллярной муцинозной опухоли поджелудочной железы, согласно своему молекулярному профилю, чаще является генетически независимым.
Цель. Оптимизация комплексной дифференциальной диагностики кистозных новообразований поджелудочной железы внедрением в клиническую практику новых технологий эндоскопического УЗИ (эндо-УЗИ).
Материал и методы. Проведен анализ результатов комплексной диагностики 424 пациентов с кистозными новообразованиями поджелудочной железы, которым было выполнено эндо-УЗИ.
Результаты. В 328 (77,4%) наблюдениях при эндо-УЗИ было достаточно данных стандартного В-режима. В 96 (22,6%) наблюдениях была необходимость в контрастном усилении: 59 (61,5%) больным выполнили оценку накопления контрастного препарата стенкой, перегородками и солидными структурами, 25 (26%) – только стенкой и перегородками, 12 (12,5%) больным выполнили оценку нодулярного компонента кистозных новообразований поджелудочной железы. Ретроспективно установлено, что использование эндо-УЗИ с контрастным усилением по сравнению с В-режимом повысило общую точность метода в дифференциальной диагностике кистозных неоплазий и постнекротических кист на 14,7%, в диагностике солидных структур кистозных новообразований – на 11,3%, в диагностике кистозно-трансформированной аденокарциномы или ассоциированной с аденокарциномой внутрипротоковой папиллярной муцинозной неоплазии – на 9,9%. Внедрение в алгоритм комплексного эндо-УЗИ контрастного усиления способствовало уменьшению числа тонкоигольных пункций.
Заключение. Собственный опыт и мнение зарубежных исследователей свидетельствуют о необходимости включения в диагностический алгоритм кистозных новообразований поджелудочной железы мультимодального эндо-УЗИ. На основании результатов исследования разработан алгоритм применения новых технологий эндо-УЗИ в дифференциальной диагностике кистозных новообразований поджелудочной железы.
Цель. Анализ результатов лечения пациентов с кистозными опухолями поджелудочной железы в условиях экспертного центра гепатопанкреатобилиарной хирургии.
Материал и методы. С 2014 по 2025 г. выполнено 386 резекций поджелудочной железы, из них 82 (21,24%) по поводу кистозных опухолей. Средний возраст пациентов составил 51 ± 10,7 года, 63,4% больных – женщины.
Результаты. Десять (12,1%) пациентов оперировано по поводу муцинозной неоплазии боковых протоков поджелудочной железы, 13 (15,88%) – по поводу муцинозной неоплазии протока поджелудочной железы. Также оперировали 25 (30,53%) больных с муцинозно-кистозной неоплазией, 1 (1,21%) – с кистозной эндокринной опухолью, 21 (25,63%) – по поводу солидной псевдопапиллярной неоплазии, 12 (14,63%) больных с серозной цистаденомой. При ретроспективном патогистологическом анализе 121 наблюдения рака головки поджелудочной железы после панкреатодуоденальной резекции установлено, что у 31 (25,61%) пациента аденокарцинома развилась на фоне муцинозной неоплазии протока поджелудочной железы различных типов.
Заключение. Кистозные опухоли поджелудочной железы представляют собой новообразования с вариабельным биологическим поведением, что требует дифференцированного подхода к диагностике и лечению.
Уважаемые коллеги! По решению и при всесторонней поддержке редакции в очередном номере “Анналов хирургической гепатологии” нами подготовлен раздел, посвященный диагностике и лечению пациентов с кистозными новообразованиями поджелудочной железы. Актуальность тематики, на наш взгляд, очевидна. Улучшение доступности инструментальных методов диагностики, таких как КТ и МРТ, приводит к значительному росту выявляемости кистозных неоплазий поджелудочной железы. При этом ввиду значительной разнородности семиотики и сложностей определения прогноза при различных видах кистозных образований в профессиональном сообществе происходит множество дискуссий в части определения тактических подходов к лечению таких больных. Существующие рекомендации зачастую предлагают различную тактику, разные базовые критерии для ее выбора, что затрудняет их использование на практике. Особые сложности возникают, когда такие пациенты проходят лечение и наблюдаются в общесоматических не узкоспециализированных медицинских учреждениях.
Игорь Евгеньевич Хатьков – академик РАН, директор Московского клинического научного центра имени А. С. Логинова, главный внештатный специалист-онколог Департамента здравоохранения города Москвы.
Издательство
- Издательство
- ИЗДАТЕЛЬСКИЙ ДОМ ВИДАР-М
- Регион
- Россия, Москва
- Почтовый адрес
- Москва, 109028, а/я 16
- Юр. адрес
- 109004, г Москва, Таганский р-н, Тетеринский пер, д 16, помещ IV, ком 2
- ФИО
- Жариков Леонид Анатольевич (ГЕНЕРАЛЬНЫЙ ДИРЕКТОР)
- Контактный телефон
- +7 (___) _______
- Сайт
- http://www.vidar.ru/